L’électrophorèse capillaire micellaire pour la détermination simultanée de l’insuline et de ses analogues dans des formulations pharmaceutiques

L’insuline joue un rôle important dans l’homéostasie de la concentration sanguine en glucose. Un déficit de cette hormone cause le diabète (de type I) qui peut être traité par injection sous-cutanée d’insuline synthétique. En plus de l’insuline humaine, plusieurs analogues ont été développés pour accélérer son absorption (Lispro, Aspart, Glulisin) ou la retarder (Glargin, Detemir). La protamine est également parfois utilisée avec l’insuline humaine, Lispro ou Aspart pour former un complexe et augmenter la durée d’action.
Le diabète est une des maladies métaboliques les plus courantes dans le monde; la prévalence ne cesse de s’élever. Beaucoup de patients sont donc concernés par le traitement qui est relativement cher et nécessite une ordonnance. Certaines formulations pharmaceutiques peuvent être trouvées sans ordonnance sur le marché parallèle mais la possibilité de contrefaçon existe. Et la mauvaise qualité de ces médicaments peut entrainer des conséquences néfastes pour la santé publique. Il est donc essentiel de développer une méthode permettant l’identification et la quantification de l’insuline humaine et de ses analogues.
Ortner et al. [1] ont déjà proposé une méthode par électrophorèse capillaire micellaire (MEKC) pour séparer simultanément l’insuline humaine et ses 5 analogues, mais ils n’analysaient pas les formulations à base de protamine. Le nombre de ces formulations n’étant pas négligeable, nous les avons incluses dans notre étude. La première étape d’optimisation a été la préparation de l’échantillon. Une solution acide (0.01M d’HCl) a finalement été choisie pour solubiliser la protamine et la Glargine. Ensuite, la composition du background electrolyte a été investiguée pour séparer les composants des formulations. Un tampon basique (50mM d’acétate d’ammonium à pH 9) a été choisi, engendrant un flux électroosmotique important et stable, une charge négative à l’insuline et empêchant l’adsorption à la paroi du capillaire. L’addition de dodécyl sulfate de sodium et d’acétonitrile s’est ensuite révélée déterminante pour la sélectivité. Les 6 insulines et les 2 excipients majeurs (le phénol et le m-crésol) ont été complètement séparés endéans 15 minutes.
La méthode précitée a ensuite été adaptée pour permettre la séparation de chaque insuline et de ses produits de dégradation.